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人(Human)脯氨酸羟化酶2(PHD2)ELISA检测试剂盒(活性)
  • 品牌:DUMABIO
  • 产地:上海
  • 型号:48/96T
  • 货号:DM-H231
  • 价格: ¥1860/盒
  • 发布日期: 2026-06-08
  • 更新日期: 2026-06-08
产品详请
产地 上海
保存条件 2-8°
品牌 DUMABIO
货号 DM-H231
用途 科研实验
检测方法 双抗夹心法
保质期 6个月
适应物种 其它
检测限 电询
数量 999
英文名称
包装规格 48/96T
标记物 电询
样本 电询
应用 科研实验
是否进口

人(Human)脯氨酸羟化酶2(PHD2)ELISA检测试剂盒(活性)


产品货号:DM-H231

产品规格:48/96T

一、产品概述
上海笃玛生物科技有限公司是专注于生命科学领域的高科技企业,秉承“以客户为中心、以产品为保障、以诚信为基础、以创新为宗旨”的发展理念,致力于为 科研工作者提供高质量的生物学试剂及解决方案。本试剂盒是公司核心产品线之一,采用自主研发的高特异性抗体对,基于经典的双抗体夹心法原理构建,可精准定量检测样本中的含量。


二、检测原理
本试剂盒采用双抗体夹心ELISA技术:将特异性捕获抗体预包被于酶标板微孔内;实验时,向微孔中加入标准品或待测样本,样本中的[检测指标]会与包被抗体特异性结合;洗涤去除未结合的杂蛋白后,加入生物素标记的检测抗体,形成“包被抗体-目标抗原-检测抗体”的免疫复合物;随后加入链霉亲和素标记的辣根过氧化物酶(HRP),生物素与链霉亲和素发生特异性结合,使HRP牢固结合于免疫复合物上; 加入TMB显色底物,HRP催化底物发生显色反应,颜色深浅与样本中[检测指标]的浓度呈正相关。通过酶标仪在450nm波长处测定各孔OD值,结合标准曲线即可计算出待测样本的[检测指标]浓度。


三、试剂盒组分
本试剂盒包含完成一次ELISA检测所需的全部核心组分,各组分经严格质检,确保实验可靠性,具体如下:

四、样本处理
1. 血清样本:采集静mai血后,室温静置2-4小时,3000rpm离心10分钟,收集上层血清,避免溶血,-20℃或-80℃保存,避免反复冻融。
2. 血浆样本:使用抗凝管(EDTA、肝素等)采集血液,采集后立即轻轻颠倒混匀,3000rpm离心10分钟,收集上层血浆,-20℃或-80℃保存。
3. 组织培养上清:细胞培养完成后,3000rpm离心5分钟,去除细胞碎片,收集上清液,-20℃保存。
4. 细胞/组织裂解液:取适量细胞或组织样本,加入预冷的裂解液,冰浴匀浆后,4℃、12000rpm离心15分钟,收集上清液,-80℃保存。
5. 所有样本在检测前需恢复至室温,震荡混匀,若有沉淀需再次离心去除,避免影响检测结果。根据样本实际情况,可使用样本稀释液进行适当稀释,确保检测浓度落在标准曲线范围内。


五、实验步骤
1. 试剂准备:实验前将所有试剂盒组分及样本恢复至室温(25℃左右),浓缩洗涤液用蒸馏水稀释至1×工作液,浓缩检测抗体、链霉亲和素-HRP按说明书比例用样本稀释液稀释至工作液,现配现用。
2. 加样:根据实验需求确定所需板条数量,空白孔加入50μL样本稀释液,标准品孔加入50μL不同浓度的标准品工作液,待测样本孔加入50μL处理后的样本(已稀释的样本直接加入,未稀释样本可根据情况用样本稀释液1:1稀释后加入);随后向所有孔中加入50μL生物素标记检测抗体工作液,轻轻振荡混匀。
3. 孵育:盖上封板膜,置于37℃恒温箱中孵育60分钟。
4. 洗涤:小心揭开封板膜,甩去孔内液体,每孔加满1×洗涤液,静置30秒后甩去,用吸水纸拍干;重复此洗涤步骤3次,若使用洗板机,洗涤次数可增加1次。
5. 加酶:每孔加入80μL链霉亲和素-HRP工作液,轻轻振荡混匀,盖上封板膜,37℃孵育30分钟。
6. 洗涤:重复步骤4的洗涤操作, 去除未结合的酶结合物。
7. 显色:每孔依次加入50μL显色液A和50μL显色液B,轻轻振荡混匀,盖上封板膜,37℃避光孵育10分钟,此时阳性孔会逐渐呈现蓝色。
8. 终止:取出酶标板,迅速向每孔加入50μL终止液,轻轻振荡混匀,蓝色会立即转为黄色。
9. 检测:加入终止液后10分钟内,使用酶标仪在450nm波长处测定各孔的OD值(若需校正,可在630nm波长处测定参考OD值,最终检测OD值=450nm OD值-630nm OD值)。


六、结果计算
1. 首先计算每个标准品、空白孔及样本孔的平均OD值(复孔检测时),空白孔OD值作为阴性对照,用于扣除背景干扰。
2. 以标准品浓度为横坐标(X轴,对数坐标),对应的OD值为纵坐标(Y轴,线性坐标),使用专业绘图软件(如Excel、GraphPad Prism)绘制标准曲线,计算回归方程(R²值应≥0.99,确保标准曲线的可靠性)。
3. 将扣除背景后的样本OD值代入回归方程,计算出样本中[检测指标]的初步浓度,再根据样本的稀释倍数计算出样本的实际浓度。


七、试剂盒性能
1. 准确性:标准品线性回归与预期浓度相关系数R值,大于等于0.9900。
2. 灵敏度: 检测浓度如资料所示。
3. 特异性:不与其它可溶性结构类似物交叉反应。
4. 重复性:板内、板间变异系数均小于15%。
5. 贮藏:2-8℃,避光防潮保存。
6. 有效期:6个月


八、储存与运输
1. 试剂盒未开封时,所有组分需密封置于2~8℃冷藏保存,避免冷冻,其中标准品冻干品可置于-20℃长期保存。
2. 试剂盒开封后,预包被酶标板需密封防潮保存,剩余试剂需按原储存条件保存,避免反复冻融,开封后建议在1个月内用完。
3. 运输过程采用冷链运输(2~8℃),避免高温、剧烈震荡,确保产品性能稳定。



九、注意事项
实验前请仔细阅读本说明书,严格按照实验步骤操作,确保实验条件(温度、孵育时间)符合要求。


十、ELISA实验小科普

针对亲和力不足的一抗、二抗,可按优先无损优化反应体系→调整抗体使用方式→样本与试剂改良的顺序逐步补救,全程兼顾信号提升与背景控制,避免因过度调整造成特异性下降。
一、优化孵育条件( ,不改变试剂本身,风险 )
延长孵育时长
抗原抗体结合需要时间,亲和力偏弱时,可在原有基础上延长一抗、二抗孵育时间。常规一抗孵育可从 60 分钟延长至 90~120 分钟,二抗从 30~40 分钟延长至 50~60 分钟。注意不要无限延长,否则会逐步增加非特异性结合,每调整一次都要观察背景变化。
提升孵育温度
在设备允许范围内统一调整至 37℃恒温孵育,相比室温,更高温度能加快分子运动,提升抗原与抗体的碰撞结合概率,有效放大弱亲和力的结合信号。全程保证酶标板受热均匀,可放置在恒温湿盒内,同时做好密封防止液体蒸发。
稳定反应环境
孵育时务必使用封板膜密封、搭配湿盒保湿,避免孔内液体浓缩或干涸。液体流失会改变局部反应浓度,不仅无法改善亲和力,还会造成数据紊乱。
二、调整抗体工作浓度与稀释方式
适度提高抗体工作浓度
结合之前的浓度梯度数据,在背景不明显升高的前提下,小幅降di稀shi倍数、提升kang体nong度。切忌大幅度提浓,否则非特异性结合会快速增加。调整后必须复测阴性孔、空白孔数值,保证背景仍在合格范围。
优化稀释操作,保护抗体活性
高倍稀释时改用分步逐级稀释,替代一步稀释法,减少浓度偏差与抗体变性。稀释过程中轻柔吹打混匀,禁止剧烈震荡,防止抗体空间结构被破坏、亲和力进一步下降。抗体工作液做到现配现用,配制后半小时内完成上样,避免室温久置导致活性衰减。
三、改良缓冲液体系,优化结合微环境
使用专用抗体稀释液
摒弃普通 PBS、纯水稀释抗体,专用稀释液含有蛋白保护剂、适宜的离子强度与缓冲体系,能维持抗体天然空间构象, 程度保留结合能力。若原有稀释液效果差,可更换配方合规的商品化抗体稀释液。
微调缓冲液 pH 与离子强度
抗原抗体结合存在最适 pH,多数体系以 7.2~7.4 为基准。可小范围微调 pH 值,同时适当调整盐离子浓度,过高或过低的盐浓度都会抑制结合。也可在抗体稀释液中加入低浓度 BSA,既保护抗体,也能减少板孔吸附损耗。
添加微量表面活性剂
在抗体稀释液中加入终浓度 0.05% 的 Tween-20,既能减少非特异结合,也能改善分子扩散状态,辅助弱亲和力抗体完成结合。
四、优化前序实验步骤,减少抗原损耗
优化样本处理
确认样本没有反复冻融、长时间室温放置,这类情况会造成抗原降解,看似抗体亲和力不足,实则是靶标含量下降。溶血、浑浊样本提前高速离心取上清,去除杂质干扰,保证抗原能正常与抗体接触。同时适当降低样本稀释倍数,提高体系内抗原浓度,推动结合反应进行。
调整封闭与洗板流程
封闭充分可以避免板孔抢占抗体结合位点,常规可维持原有封闭条件,若封闭不足可小幅延长封闭时间。洗板遵循 “适度原则”,不要过度洗板,过度冲刷会洗脱结合不牢固的抗原 - 抗体复合物,进一步降低信号;洗板次数、浸泡时间可维持原有标准,仅在背景偏高时轻微调整。
五、针对不同抗体的专项补救
一抗亲和力不足
一抗是结合靶抗原的核心,除上述方法外,若为构象依赖性抗体,要全程避免样本高温、剧烈处理,保护抗原天然结构;若是多克隆抗体,可优先优化孵育与稀释条件,尽量不盲目提高浓度。
酶标二抗亲和力不足
二抗负责信号放大,除提升浓度、延长孵育外,重点确认二抗种属匹配无误,种属错配会表现为类似亲和力不足的现象。同时检查酶标记物活性,若酶活性下降,整体显色信号也会偏弱,可更换新鲜酶标二抗工作液。
六、补救无效后的最终方案
若经过多轮条件优化,阳性信号依旧低于 0.2、无法进入有效线性区间,说明该抗体本身亲和力存在硬缺陷,不再继续调整。此时建议更换同靶点其他批次、不同品牌的抗体,或是更换抗体类型,比如将亲和力偏弱的单克隆抗体替换为多克隆抗体,重新开展梯度预实验。


六、综合结果判定与异常结果排查
1. 条件的综合判定
由于抗体浓度、孵育时间和孵育温度之间存在交互作用,不能简单地将每个参数单独的 值直接组合,而需要进行交叉验证。例如,若 37℃孵育 1 小时和 4℃孵育过夜的信噪比相近,应根据实验效率选择 37℃孵育;若 4℃孵育过夜的信噪比显著更高,且实验对灵敏度要求较高,则选择 4℃过夜孵育。最终的 组合应是在满足实验灵敏度和特异性要求的前提下,实验效率 、操作最简便的条件。
2. 常见异常结果的排查
若所有浓度梯度的净 OD 值均低于 0.2,且强阳性对照无明显信号,可能是抗体失活、抗原包被不足或孵育过程中液体蒸发导致的,需更换新抗体、提高包被浓度,并确保孵育时酶标板密封良好且置于湿盒中。若所有浓度梯度的净 OD 值均高于 2.5,且阴性对照 OD 值超过 0.2,说明抗体浓度过高或封闭不充分,需扩大抗体稀释范围,或延长封闭时间。若信噪比始终低于 3,且阴性对照 OD 值较高,可能是抗体特异性差、洗涤不充分或孵育时间过长导致的,需更换高特异性抗体、增加洗涤次数,或缩短孵育时间。若不同梯度之间的 OD 值无明显差异,说明梯度范围设置过窄,或抗原包被过量导致抗体结合已达到饱和,需扩大梯度范围或降di包被nong度。
七、优化结果的验证
通过上述分析得到的 孵育条件,必须经过严格的验证才能用于正式实验。首先进行批内重复性验证,用同一批强阳性、弱阳性和阴性样本在相同条件下重复实验 3 次,计算各样本 OD 值的变异系数,批内 CV 应小于 10%。其次进行批间验证,使用不同批次的抗体、酶标板和封闭液进行实验,批间 CV 应小于 15%。 进行样本适用性验证,用至少 20 例确证阳性样本和 20 例确证阴性样本进行检测,评估方法的灵敏度和特异性,确保假阳性率和假阴性率符合实验要求。
优化后的条件并非一成不变,当更换抗体批次、封闭液品牌或实验仪器时,需重新进行抗体孵育条件的微调。长期使用同一方法时,建议每 3 个月进行一次抗体浓度和孵育时间的复核,及时发现抗体活性下降等问题,保证实验结果的稳定性和可靠性。
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