恒温水浴锅、低温离心机、可见分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96孔板和蒸馏水。

如何避免样本放置过久导致的检测结果偏高？
要避免样本放置过久导致的检测结果偏高，核心是从样本采集、处理、储存到检测的全流程控制样本基质稳定性，减少杂酶释放、非特异性反应及浑浊干扰，具体措施如下：
缩短样本常温暴露时间，全程低温操作
样本采集后需立即置于冰上，避免室温放置超过 30 分钟。组织匀浆、细胞裂解等预处理操作需在冰浴中进行，加入裂解液后尽快完成离心（4℃条件下 8000–12000g 离心 10–15 分钟），取上清液后立即用于检测或转移至低温储存。若无法即时检测，需在 15 分钟内将处理后的样本分装冻存，杜绝样本在室温下长时间静置引发的细胞进一步裂解、杂酶释放。 
优化样本储存条件，防止酶激活与基质变化
根据样本类型选择合适的储存方式：血清 / 血浆样本采集后 1 小时内分离，短期储存（＜24 小时）放 4℃冰箱，长期储存（＞24 小时）分装为 50–100μL 小体积，-80℃冻存且避免反复冻融；组织 / 细胞样本取样后立即液氮速冻，再转移至 - 80℃保存，制备匀浆时可加入试剂盒配套的蛋白酶抑制剂（如 PMSF）或特异性酶抑制剂，抑制杂酶活性与非特异性反应。储存时做好标注，遵循 “先进先出” 原则，优先使用储存时间较短的样本。 
规范样本解冻与复溶操作，减少干扰因素
冻存样本需在冰上缓慢解冻，避免 37℃水浴快速解冻导致蛋白变性、酶异常激活；解冻后轻轻混匀，切勿剧烈振荡，防止产生气泡或进一步破坏细胞结构。解冻后的样本需在 30 分钟内完成检测，检测前可再次 4℃离心 5 分钟，去除解冻过程中产生的蛋白沉淀，避免浑浊颗粒干扰吸光度读数。